kombitest™ cd45 fitc / cd14 pe

Transkript

V
C
KOMBITEST™ CD45 FITC / CD14 PE
Cat. No. / Kat. č.: ED7012
expressed on monocytes, macrophages and weakly on
granulocytes; it is expressed by most tissue macrophages. This
antibody also reacts with soluble forms of CD14 found in serum
and in the urine of some nephrotic patients. The monoclonal
antibody MEM-15 was assigned to CD14 during the Human
Leukocyte Differentiation Antigen workshop (HLDA3 WS Code:
M 252).
ENGLISH
1. Specification
Content
Usage
Specificity
Clone
Isotype (mouse)
Fluorochrome
λ excitation
Emission
maximum
50 tests, 1 ml
20 µl per test
CD45
MEM-28
IgG1
FITC
488 nm
CD14
MEM-15
IgG1
PE
488 nm
525 nm
575 nm
5. Reagent provided
The reagent contains premixed combination of mouse
monoclonal antibody against human CD45 antigen (clone
MEM-28) labeled with Fluorescein isothiocyanate (FITC), and
mouse monoclonal antibody against human CD14 antigen
(clone MEM-15) labeled with R-phycoerythrin (PE). The labeled
antibodies are diluted at optimum concentration in phosphate
buffered saline (PBS) containing 15mM sodium azide and 0.2%
(w/v) high-grade protease free Bovine Serum Albumin (BSA) as
a stabilizing agent. The content of a vial (1 ml) is sufficient for
50 tests.
2. Intended use
The KOMBITEST™ CD45 FITC / CD14 PE is designed for
establishing an optimal lymphocyte gate for immunophenotyping of erythrocyte-lysed whole blood.
3. Principle
6. Storage
This test is based on specific binding of monoclonal antibodies
to the antigenic determinants expressed on the surface of
leukocytes. The monoclonal antibodies are labeled with
different fluorochromes which are excited via laser beam from a
flow cytometer during analysis. Subsequent emissions of light
from fluorochromes of each cell are collected and analyzed by a
flow cytometer. The fluorescence intensity differences enable
separation of cell subsets based on expression of analyzed
antigens.
Store vial in the dark at 2-8°C. Do not freeze.
7. Precautions
Intended for professional use only.
Do not use after expiration date stamped on vial label.
Avoid prolonged exposure to light.
The content of the vial must not freeze.
Avoid contamination of the reagent.
Any non-performance of staining protocol may produce
false results.
The reagent contains sodium azide (NaN3) which is highly
toxic in pure form. However, the concentration in the
reagent (15mM) is not considered as hazardous. When
disposing the reagent, flush the sink with large volume of
water to avoid accumulation of explosive metal-azide
in plumbing.
Blood samples are considered as potentially infectious
and must be handled with care. Avoid all contact of the
sample with the skin, eyes and mucosa.

Specific staining of blood cells is performed by incubation of
blood samples with the reagent followed by a lysis of red blood
cells. Afterwards, unaffected leukocytes are subjected to
analysis by a flow cytometer.
4. Specificity
The antibody MEM-28 reacts with all alternative forms of human
CD45 phosphotyrosine phosphatase (Leukocyte Common
Antigen), a 180-220 kDa single chain type I transmembrane
protein expressed at high level on all cells of hematopoietic
origin, except from erythrocytes and platelets. The monoclonal
antibody MEM-28 was assigned to CD45 during the Human
Leukocyte Differentiation Antigen workshop (HLDA3 WS Code:
NL 833a).
8. Necessary material not supplied
Material necessary for collection of peripheral blood, test tubes
for staining of blood samples (e.g. 12 × 75 mm), automatic
pipettes with disposable tips, vortex mixer, centrifuge,
The antibody MEM-15 reacts with CD14, a 53-55 kDa GPI
(glycosylphosphatidylinositol) linked membrane glycoprotein
1/7
ED7012_EN_CZ_SK_100211
commercial lysing solution, phosphate buffered saline (PBS),
flow cytometer.
Blood samples from abnormal patients may exhibit
abnormal values of positive cells.
Red blood cells from abnormal patients may be resistant
to lysis using lysing solutions.
In case of hyperleukocytose sample, it is recommended to
dilute blood sample with PBS to obtain leukocyte density
approximately 5 × 106 leukocytes/ml.
Blood samples should be stained and analyzed within 24
hours from the blood collection.
9. Staining protocol
1.
Collect peripheral blood in a sterile tube with an
anticoagulant (e.g. Heparin, EDTA).
2. Add 20 µl of KOMBITEST™ CD45 FITC / CD14 PE
reagent to a test tube.
3. Add 100 µl of blood sample to the tube. Vortex the
tube.
4. Incubate the tube for 20-30 minutes at room
temperature in the dark.
5. Perform lysis of red cells using lysing solution. It is
recommended to use a commercial lysing solution
containing formaldehyde as a fixative. Follow the
instructions of the lysing solution manufacturer.
6. Centrifuge the tube for 5 minutes at 300 g.
7. Remove supernatant and resuspend pellet with
3-4 ml of PBS.
8. Centrifuge the tube for 5 minutes at 300 g.
9. Remove supernatant and resuspend pellet with 0.3 –
0.5 ml of PBS.
10. Analyze sample immediately using flow cytometer or
store sample at 2-8°C in the dark and analyze within 24
hours provided that cells were fixed.
ČESKY
1. Specifikace produktu
Obsah
Použití
Specificita
Klon
Izotyp (myší)
Fluorochrom
λ excitace
Emisní
maximum
3.
4.
CD14
MEM-15
IgG1
PE
488 nm
525 nm
575 nm
KOMBITEST™ CD45 FITC / CD14 PE je In vitro diagnostický
zdravotnický prostředek, který je určený pro nastavení
optimálního ohraničení lymfocytů (lymphocyte gate) při
imunofenotypizaci lymfocytů v lidské periferní krvi pomocí
průtokové cytometrie.
Following procedure is recommended. However, any other
lymphocyte gate assessment procedure may be successful
provided that nonlymphocytes (debris, monocytes,
granulocytes, etc.) are eliminated using the same principle.
2.
CD45
MEM-28
IgG1
FITC
488 nm
2. Použití
10. Lymphocyte gate assessment procedure
1.
50 testů, 1 ml
20 µl na test
3. Princip
Analyze sample stained with KOMBITEST™
CD45 FITC / CD14 PE using a flow cytometer. Make
compensation of fluorescent signals prior or after data
acquisition. Figure 1 shows ungated cell subsets on the
CD45 FITC versus CD14 PE dot-plot.
Display ungated data in a Side Scatter (SSC) versus
Forward Scatter (FSC) dot-plot and set gate A including
all lymphocytes as shown in figure 2.
Display events gated on the region A as a CD45 FITC
versus CD14 PE dot-plot and create a gate B around
lymphocytes (figure 3). The gate B discriminates all
nonlymphocytes (debris, monocytes, granulocytes,
etc.).
Display events gated on the region B as a Side Scatter
(SSC) versus Forward Scatter (FSC) dot-plot as shown
in figure 4. Establish an optimal gate for lymphocytes
(gate C). Please note that the optimal lymphocyte gate
is valid only for data acquired under the same
experimental conditions and with the same blood
specimen.
Tento test je založen na specifické vazbě monoklonálních
protilátek na antigeny, které jsou exprimovány na povrchu
leukocytů. Monoklonální protilátky jsou značené odlišnými
fluorescenčními značkami, které jsou excitovatelné společným
zdrojem záření. Během analýzy vzorku průtokovým cytometrem
je detekována emise fluorescence jednotlivých buněk. Rozdíly
v emisi záření fluorochromů umožňují separovat skupiny
leukocytů na základě rozdílné exprese analyzovaných antigenů.
Specifické barvení leukocytů probíhá v periferní krvi. Po
inkubaci vzorku se značenými protilátkami jsou červené krvinky
odstraněny pomocí lyze a leukocyty jsou analyzovány
průtokovým cytometrem.
4. Specificita
Monoklonální protilátka MEM-28 reaguje se všemi izoformami
molekuly CD45. Fosfotyrosinfosfatasa CD45 (Leucocyte
Common Antigen) je jednořetězcový transmembránový protein
o molekulové hmotnosti 180-220 kDa, exprimovaný ve velkém
množství u všech buněk hemotopoetického původu kromě
erytrocytů a krevních destiček. Specificita monoklonální
protilátky MEM-28 byla ověřena v rámci mezinárodního
pracovního semináře o lidských leukocytárních diferenciačních
antigenech (HLDA3 WS Code: NL 833a).
11. Limitations
Flow cytometer may produce false results if the device
has not been aligned and maintained appropriately.
Data may be incorrectly interpreted if fluorescent signals
were compensated wrongly or if gates were positioned
inaccurately.
2/7
ED7012_EN_CZ_SK_100211
Monoklonální protilátka MEM-15 reaguje s molekulou CD14,
membránovým glykoproteinem o molekulové hmotnosti 5355 kDa zakotveným pomocí glycosylfosfatidylinositolu,
exprimovanou monocyty, makrofágy a slabě i granulocyty.
Protilátka MEM-15 reaguje také s rozpustnou formou CD14,
která se nalézá v séru a moči některých nefrotických pacientů.
Specificita monoklonální protilátky MEM-15 byla ověřena
v rámci mezinárodního pracovního semináře o lidských
leukocytárních diferenciačních antigenech (HLDA3 WS Code:
M 252).
4. Inkubujte zkumavku 20-30 minut v temnu za laboratorní
teploty.
5. Proveďte lyzi červených krvinek pomocí lyzačního
roztoku. Je doporučeno používat komerční lyzační
činidlo, které obsahuje formaldehyd fixující buňky.
Postupujte podle návodu výrobce lyzačního činidla.
6. Centrifugujte zkumavku 5 minut při 300 g.
7. Odstraňte supernatant a resuspendujte sediment
pomocí 3-4 ml PBS.
8. Centrifugujte zkumavku 5 minut při 300 g.
9. Odstraňte supernatant a resuspendujte sediment
pomocí 0,3-0,5 ml PBS.
10. Analyzujte vzorek ihned po obarvení pomocí
průtokového cytometru. V případě že byl vzorek fixován
paraformaldehydem, je možné vzorek uskladnit v temnu
při 2-8°C a analyzovat do 24 hodin.
5. Popis reagencie
Reagencie obsahuje směs dvou myších monoklonálních
protilátek: protilátka proti lidskému antigenu CD45 (klon MEM28) je značená fluorescein isothiokyanátem (FITC) a protilátka
proti lidskému antigenu CD14 (klon MEM-15) je značená
R-phycoerythrinem (PE). Značené protilátky byly naředěny na
optimální koncentrace do stabilizačního roztoku, který obsahuje
PBS (pH 7,4), 0,2% hovězí sérový albumin a 15mM NaN3.
Obsah vialky (1 ml reagencie) odpovídá provedení 50 testů.
10. Postup ohraničení lymfocytů
Následující postup nastavení optimálního ohraničení lymfocytů
(lymphocyte gate) je doporučený, avšak je možné postupovat
i jiným způsobem.
1.
6. Skladování
Vialku s reagencií uchovávejte v temnu při teplotě 2-8 °C. Doba
použitelnosti reagencie je vyznačena na štítku vialky.
2.
7. Upozornění
Výrobek je určen pro profesionální uživatele.
Nepoužívejte reagencii po uplynutí doby použitelnosti.
Reagencii nevystavujte dlouhodobému působení světla.
Obsah vialky nesmí zmrznout.
Chraňte obsah vialky před kontaminací.
Nedodržení postupu měření může ovlivnit výsledky testu.
Reagencie obsahuje azid sodný (NaN3), který je v čistém
stavu vysoce toxický, avšak koncentrace, která je v této
reagencii (15 mM), není již považována za nebezpečnou.
Při likvidaci reagencie obsahující azid splachujte velkým
množstvím vody.
Krevní vzorky jsou považovány za potenciálně infekční
materiál a proto s nimi musí být náležitě nakládáno.
Vyvarujte se kontaktu vzorků s pokožkou, očima
a sliznicemi.

3.
4.
Vzorek obarvený pomocí reagencie KOMBITEST™
CD45 FITC / CD14 PE analyzujte průtokovým
cytometrem. Proveďte kompenzaci fluorescenčních
signálů naměřených dat. Na obrázku 1 je znázorněno
umístění populací leukocytů v zobrazení CD45 FITC
vs. CD14 PE.
Data poté zobrazte v grafu side-scatter (SSC) versus
forward-scatter (FSC). Ohraničte populaci lymfocytů,
jak je znázorněno na obrázku 2. Region A by měl být
dostatečně velký, aby zahrnoval všechny lymfocyty.
Zobrazte události z regionu A v grafu CD45 FITC vs.
CD14 PE. Vytvořte region B ohraničující lymfocyty, jak
je znázorněno na obrázku 3. Při tomto zobrazení dat je
oddělena populace lymfocytů od debrisu a monocytů,
které v předchozím zobrazení (Obr. 2) nešly spolehlivě
oddělit.
Zobrazte události z regionu B v grafu side-scatter
(SSC) versus forward-scatter (FSC). Nastavte
optimální ohraničení populace lymfocytů (region C).
Toto ohraničení je platné pouze pro data naměřená se
stejným vzorkem krve a za stejných experimentálních
podmínek.
11. Omezení metody
8. Potřebné vybavení a materiál, který není
dodáván
Průtokový cytometr může poskytovat špatné hodnoty,
pokud není dobře seřízen a udržován.
Data mohou být špatně interpretována, pokud jsou
fluorescenční signály špatně kompenzované, případně
pokud jsou regiony buněk špatně umístěné.
Krevní vzorky od abnormálních pacientů mohou
vykazovat abnormální hodnoty procent pozitivních buněk.
Červené krvinky některých abnormálních pacientů mohou
být rezistentní k lyzi pomocí lyzačních roztoků.
V případě krevního vzorku s abnormálně vysokým počtem
leukocytů je třeba vzorek naředit pomocí PBS na hodnotu
kolem 5 × 106 leukocytů na ml.
Krevní vzorky by neměly být skladovány déle než 24
hodin před barvením.
Nezbytný materiál pro odběr periferní krve, vhodné zkumavky
pro barvení buněk (např. 12 × 75 mm), sada pipet
s jednorázovými špičkami, centrifuga, vortex, lyzační roztok,
pufr PBS, průtokový cytometr.
9. Postup barvení
1. Odeberte periferní krev do sterilní odběrové zkumavky
obsahující antikoagulant (např. Heparin, EDTA).
2. Pipetujte 20 µl reagencie KOMBITEST™ CD45 FITC /
CD14 PE do zkumavky.
3. Přidejte 100 µl promíchané periferní krve a směs
promíchejte pomocí vortexu.
3/7
ED7012_EN_CZ_SK_100211
SLOVENSKY
5. Popis reagencie
Reagencia obsahuje zmes dvoch myších monoklonových
protilátok: protilátka proti ľudskému antigénu CD45 (klon MEM28) je označená fluorescein izotiokyanátom (FITC) a protilátka
proti ľudskému antigénu CD14 (klon MEM-15) je označená
R-phycoerythrinom (PE). Označené protilátky boli nariedené na
optimálnu koncentráciu do stabilizačného roztoku, ktorý
obsahuje PBS (pH 7,4), 0,2% hovädzí sérový albumín a 15mM
NaN3. Obsah fľaštičky (1 ml reagencie) odpovedá uskutočneniu
50 testov.
1. Špecifikácia produktu
Obsah
Použitie
Špecifičnosť
Klon
Izotyp (myší)
Fluorochróm
λ excitácia
Emisné
maximum
50 testov, 1 ml
20 µl na test
CD45
MEM-28
IgG1
FITC
488 nm
CD14
MEM-15
IgG1
PE
488 nm
525 nm
575 nm
6. Skladovanie
2. Použitie
Fľaštičku s reagenciou uschovávajte v temne pri teplote 2-8 °C.
Doba použiteľnosti reagencie je vyznačená na štítku fľaštičky.
KOMBITEST™ CD45 FITC / CD14 PE je In vitro diagnostický
zdravotnícky prostriedok, ktorý je určený pre nastavenie
optimálneho ohraničenia lymfocytov (lymphocyte gate) pri
imunofenotypizácii lymfocytov v ľudskej periférnej krvi pomocou
prietokovej cytometrie.
7. Upozornenie
Výrobok je určený pre profesionálnych užívateľov.
Nepoužívajte reagenciu po uplynutí doby použiteľnosti.
Reagenciu nevystavujte dlhodobému pôsobeniu svetla.
Obsah fľaštičky nesmie zmrznúť.
Chráňte obsah fľaštičky pred kontamináciou.
Nedodržanie postupu merania môže ovplyvniť výsledky
testu.
Reagencia obsahuje azid sodný (NaN3), ktorý je v čistom
stave vysoko toxický, avšak koncentrácia prítomná v tejto
reagencii (15 mM) už nieje považovaná za nebezpečnú.
Pri likvidácii reagencie obsahujúcej azid splachujte
umývadlo veľkým množstvom vody.
Krvné vzorky sú považované za potenciálne infekčný
materiál a preto sa s nimi musí zaobchádzať opatrne.
Vyvarujte sa kontaktu vzoriek s pokožkou, očami
a sliznicami.

3. Princíp
Tento test je založený na špecifickej väzbe monoklonových
protilátok na antigény, ktoré sú exprimované na povrchu
leukocytov. Monoklonové protilátky sú označené odlišnými
fluorescenčnými značkami, ktoré sú excitovateľné spoločným
zdrojom žiarenia. V priebehu analýzy vzorky prietokovým
cytometrom sa zaznamená fluorescencia jednotlivých buniek.
Rozdiely v emisii žiarenia fluorochrómov umožňujú separovať
skupiny leukocytov na základe rozdielnej expresie
analyzovaných antigénov.
Špecifické značenie leukocytov prebieha v periférnej krvi. Po
inkubácii vzorky s označenou protilátkou sú červené krvinky
odstránené pomocou lýzy a leukocyty sú analyzované
prietokovým cytometrom.
8. Potrebné vybavenie a materiál, ktorý sa
nedodáva
4. Špecifičnosť
Materiál potrebný na odber periférnej krvi, vhodné skúmavky
pre značenie buniek (napr. 12 × 75 mm), sada pipiet
s jednorázovými špičkami, centrifúga, vortex, lyzačný roztok,
PBS tlmivý roztok, prietokový cytometer.
Monoklonová protilátka MEM-28 reaguje so všetkými
izoformami molekuly CD45. Fosfotyrozínfosfatáza CD45
(Leucocyte
Common
Antigen)
je
jednoreťazcový
transmembránový proteín s molekulovou hmotnosťou 180-220
kDa, exprimovaný vo veľkom množstve u všetkých buniek
hematopoetického pôvodu, okrem erytrocytov a krvných
doštičiek. Špecifičnosť monoklonovej protilátky MEM-28 bola
overená v rámci medzinárodného pracovného seminára o
ľudských leukocytárnych diferenciačných antigénoch (HLDA3
WS Code: NL 833a).
9. Postup značenia
1. Odoberte periférnu krv do sterilnej odberovej skúmavky
obsahujúcej antikoagulant (napr. Heparín, EDTA).
2. Pipetujte 20 µl reagencie KOMBITEST™ CD45 FITC /
CD14 PE do skúmavky.
3. Pridajte 100 µl premiešanej periférnej krvi do
skúmavky a zmes premiešajte pomocou vortexu.
4. Skúmavku inkubujte 20-30 minút v temne pri
laboratórnej teplote.
5. Zlyzujte červené krvinky pomocou lyzačného roztoku.
Odporúča sa používať komerčné lyzačné činidlo, ktoré
obsahuje formaldehyd a fixuje bunky. Postupujte podľa
návodu od výrobcu lyzačného činidla.
6. Centrifugujte skúmavku 5 minút pri 300 g.
7. Odstráňte supernatant a resuspendujte sediment
pomocou 3-4 ml PBS.
8. Centrifugujte skúmavku 5 minút pri 300 g.
Monoklonová protilátka MEM-15 reaguje s molekulou CD14,
membránovým glykoproteínom s molekulovou hmotnosťou 5355 kDa zakotveným pomocou glykosylfosfatidylinositolu,
exprimovanou monocytmi, makrofágmi a v malej miere i
granulocytmi. Protilátka MEM-15 reaguje aj s rozpustnou
formou CD14, ktorá sa nachádza v sére a v moči niektorých
nefrotických pacientov. Špecifičnosť monoklonovej protilátky
MEM-15 bola v rámci medzinárodného pracovného seminára o
ľudských leukocytárnych diferenciačných antigénoch (HLDA3
WS Code: M 252).
4/7
ED7012_EN_CZ_SK_100211
9. Odstráňte supernatant a resuspendujte
pomocou 0,3-0,5 ml PBS.
10. Vzorky analyzujte na prietokovom cytometri
označení. V prípade, že vzorky boli
formaldehydom, je možné tieto vzorky
v temne pri 2-8°C a analyzovať do 24 hodín.
sediment
ENGLISH / ČESKY / SLOVENSKY
ihneď po
fixované
uskladniť
Example data / Vzorové vyhodnocení / Vzorové
vyhodnotenie
10. Postup ohraničenia lymfocytov
Odporúčame použiť nasledujúci postup nastavenia optimálneho
ohraničenia lymfocytov (lymphocyte gate), je však možné
postupovať aj iným spôsobom.
1. Vzorku označenú pomocou reagencie KOMBITEST™
CD45 FITC / CD14 PE analyzujte prietokovým
cytometrom. Vykonajte kompenzáciu fluorescenčných
signálov z nameraných hodnôt. Na obrázku 1 je
znázornené umiestnenie populácie leukocytov
v zobrazení CD45 FITC vs. CD14 PE.
2. Dáta ďalej zobrazte v grafe side-scatter (SSC) proti
forward-scatter (FSC). Ohraničte populáciu lymfocytov,
ako je to znázornené na obrázku 2. Región A by mal
byť dostatočne veľký na to, aby zahŕňal všetky
lymfocyty.
3. Udalosti z regiónu A zobrazte v grafe CD45 FITC vs.
CD14 PE. Vytvorte región B ohraničujúci lymfocyty,
ako je to znázornené na obrázku 3. Pri tomto
zobrazení dát je oddelená populácia lymfocytov od
debrisu a monocytov, ktoré v predchádzajúcom
zobrazení
(Obr. 2) nemohli byť spoľahlivo oddelené.
4. Udalosti z regiónu B zobrazte v grafe side-scatter
(SSC) proti forward-scatter (FSC). Nastavte optimálne
ohraničenie populácie lymfocytov (región C). Toto
ohraničenie je platné iba pre dáta namerané z rovnakej
vzorky krvi a pri rovnakých experimentálnych
podmienkach.
Fig. 1: Leukocytes stained with
Obr. 1: Leukocyty obarvené reagencií
Obr. 1: Leukocyty označené reagenciou
11. Obmedzenia metódy
Prietokový cytometer môže poskytovať nepresné
výsledky, ak nieje dobre nastavený a udržiavaný.
Dáta môžu byť zle interpretované, ak sú fluorescenčné
signály nedostatočne kompenzované alebo ak sú regióny
buniek zle umiestnené.
Krvné vzorky od abnormálnych pacientov môžu vykazovať
abnormálne percentuálne hodnoty pozitívnych buniek.
Červené krvinky niektorých abnormálnych pacientov môžu
byť rezistentné voči lýze pomocou lyzačných roztokov.
V prípade krvnej vzorky s abnormálne vysokým počtom
leukocytov je potrebné vzorku nariediť pomocou PBS na
hodnotu približne 5 × 106 leukocytov na ml.
Krvné vzorky by nemali byť skladované dlhšie ako 24
hodín pred značením.
Fig. 2: Delimination of all lymphocytes (gate A)
Obr. 2: Ohraničení všech lymfocytů pomocí regionu A
Obr. 2: Ohraničenie všetkých lymfocytov pomocou regiónu A
5/7
ED7012_EN_CZ_SK_100211
Guttinger M et al. (1992) CD45 phosphotyrosine phosphatase
and p56lck protein tyrosine kinase: a functional complex crucial
in T cell signal transduction. Int Immunol. 4: 1325-30
Stover DR et al. (1991) Protein-tyrosine-phosphatase CD45 is
phosphorylated transiently on tyrosine upon activation of Jurkat
T cells. Proc Natl Acad Sci USA 88: 7704-7707
Taetle R et al. (1991) Regulation of CD45 expression in human
leukemia cells. Leukemia 5: 309-314
Nakano A et al. (1990) Expression of leukocyte common
antigen (cd45) on various human leukemia/lymphoma cell lines.
Acta Pathol Jpn. 40: 107-15
Yamada A et al. (1990) Effect of activation of protein kinase C
on CD45 isoform expression and CD45 protein tyrosine
phosphatase activity in T cells. Eur J Immunol. 20: 1655-60
Fig. 3: CD45 vs. CD14, gated on region A
Obr. 3: Události z regionu A. Lymfocyty jsou ohraničeny regionem B.
Obr. 3: Udalosti z regiónu A. Lymfocyty sú ohraničené regiónom B.
Bazil V et al. (1989) Sialic acid-dependent epitopes of CD45
molecules of restricted cellular expression. Immunogenetics 29:
202-5
Horejsi V et al. (1988) Monoclonal antibodies against human
leucocyte antigens. II. Antibodies against CD45 (T200), CD3
(T3), CD43, CD10 (CALLA), transferrin receptor (T9), a novel
broadly expressed 18-kDa antigen (MEM-43) and a novel
antigen of restricted expression (MEM-74). Folia Biol (Praha).
34: 23-34
Bazil V et al. (1986) Biochemical characterization of a soluble
form of the 53-kDa monocyte surface antigen. Eur J Immunol.
16: 1583-9
Leukocyte Typing VI., Kishimoto T. et al. (Eds.), Garland
Publishing Inc. (1997).
Leukocyte Typing V., Schlossman S. et al. (Eds.), Oxford
University Press (1995).
Fig. 4: Optimal gate for lymphocytes (gate C)
Obr. 4: Nastavení optimálního ohraničení lymfocytů. Zobrazeny jsou
Leukocyte Typing IV., Knapp W. et al. (Eds.), Oxford University
Press (1989).
události z regionu B.
Obr. 4: Nastavenie optimálneho ohraničenia lymfocytov. Na
obrázku sú zobrazené udalosti z regiónu B.
Leukocyte Typing III., McMichael A. J. et al (Eds.), Oxford
University Press (1987).
References / Literatura / Literatúra
Asai Y et al. (2007) Soluble CD14 Discriminates Slight
Structural Differences between Lipid As That Lead to Distinct
Host Cell Activation. J Immunol. 179: 7674-83
Lodrup Carlsen KC and Granum B (2007) Soluble CD14: role in
atopic disease and recurrent infections, including otitis media.
Curr Allergy Asthma Rep. 7: 436-43
Fernández-Real JM et al. (2003) CD14 monocyte receptor,
involved in the inflammatory cascade, and insulin sensitivity. J
Clin Endocrinol Metab. 88: 1780-4
Juan TS et al. (1995) Identification of a domain in soluble CD14
essential for lipopolysaccharide (LPS) signaling but not LPS
binding. J Biol Chem. 270: 17237-42
6/7
ED7012_EN_CZ_SK_100211
Explanation of symbols / Vysvětlení symbolů /
Vysvetlenie symbolov
h
M
i
X
l
8°C
2°C
g
H
In Vitro Diagnostic Medical Device
In vitro diagnostický zdravotnický prostředek
In vitro diagnostický zdravotnícky prostriedok
Catalog number
Katalogové číslo
Katalógové číslo
Manufacturer identification
Výrobce
Výrobca
Consult the manual before use
Viz návod k použití
Viď návod na použitie
Sufficient for N test
Lze použít pro N testů
Postačujúce na vykonanie N testov
Store within temperature limits
Rozmezí skladovacích teplot
Rozmedzie skladovacích teplôt
Batch code
Číslo šarže
Use by
Použitelné do
Použiteľné do
Manufacturer / Výrobce / Výrobca
EXBIO Praha, a.s.
Nad Safinou II 366
252 42 Vestec, Czech Republic
Tel: +420 261 090 666
Fax: +420 261 090 660
E-mail: [email protected]
http://www.exbio.cz
7/7
ED7012_EN_CZ_SK_100211